掌握内耳膜迷路取材技术，是开展内耳病理学研究和组织化学研究以及分子生物学研究的必备手段，以下是搜集整理的一篇探究大鼠内耳解剖结构的论文范文，欢迎阅读查看。

　　大鼠作为动物模型，被广泛地应用于内耳研究中，包括化学制剂和重金属的耳毒性研究，噪声、冲击波的损害性试验，以及各种原因所致听力损失的治疗研究等。尽管各种实验的内容和目的不同，但都不可避免地需要观察和评估大鼠内耳的病理改变或者需要取出内耳膜迷路结合分子生物学检查方法评判某些特定基因或特殊蛋白质的变化。因此，了解大鼠内耳结构、掌握大鼠内耳膜迷路取材技术是开展内耳研究的最基本训练科目之一。本文重点介绍大鼠内耳的解剖结构及大鼠内耳膜迷路取材技术，以期与同道交流，并为初学者提供参考经验。

　　1大鼠内耳的解剖结构

　　大鼠内耳位于颞骨内，其骨性外壳被称为骨迷路(BonyLabyrinth)(图1A)，内部包裹与骨迷路形状相似的悬浮于外淋巴液中的膜迷路(MembranousLaby?rinth)(图1B)。内耳可分为前部的耳蜗(Cochlea)和后部的前庭(Vestibule)两部分。

　　1.1耳蜗

　　大鼠骨性耳蜗是一个中空盘旋2.2周的螺旋形骨管，其中心的蜗轴(modiolus)在大鼠正常头位时指向前下方。为描述方便，我们暂且规定蜗尖朝上。蜗轴上呈螺旋状发出的骨性螺旋板(osseousspirallami?na)自蜗底向顶部盘旋，向外与耳蜗基底膜(basilarmembrane)相接。在骨性螺旋板下方的蜗轴内部有一个类似螺旋式盘旋的骨管，称为蜗轴螺旋管(Rothenthal'sCanal)，其内为螺旋神经节(spiralgan?glion)，包括神经元(SpiralGanglionNeurons,SGNs)、胶质细胞、耳蜗传入和传出神经纤维等(图1C)。

　　SGNs可分为Ⅰ型和Ⅱ型。其中Ⅰ型SGNs约占传入神经元总数的90-95%,Ⅱ型SGNs约占传入神经元总数的5-10%[1,2].两类传入神经纤维和传出神经纤维仅在穿出疆孔之前有施万细胞包裹，进入基底膜耳蜗螺旋器(Cortiorgan)的传入和传出神经纤维均裸露不再有髓鞘包裹。其中Ⅰ型传入神经末梢与内毛细胞(InnerHairCells,IHCs)建立突触联系，Ⅱ型传入神经末梢与外毛细胞(OuterHairCells,OHCs)相接(图3A)。进入IHCs下方的来自内橄榄核耳蜗束神经纤维的末梢与Ⅰ型传入神经纤维建立突触联系但并不与内毛细胞直接接触，而横穿Corti隧道进入外毛细胞下方的耳蜗上隧道传出神经纤维的末梢则与OHCs建立直接的突触联系。在一般情况下，一个内毛细胞与大约20个Ⅰ型螺旋神经节细胞的神经末梢相联系，而一根Ⅱ型传入神经纤维则与大约10个外毛细胞相联系。因此不难根据毛细胞的数目对Ⅰ型螺旋神经节总数和Ⅱ型螺旋神经节总数做大致的推算[1,3].蜗轴螺旋管内所有神经纤维的另一端经螺旋管内侧骨壁进入蜗轴中心汇聚成听神经束，在内听道的底部向内转弯入颅。

　　由于外毛细胞的高度自耳蜗底回向顶回逐渐增加，内、外毛细胞的静纤毛长度也相应变长，因此Cor?ti器的高度、宽度及质量在耳蜗的不同部位并不相同，其受力后形变的程度(其倒数即为劲度)自然也不相同。小鼠耳蜗Corti器的宽度从耳蜗底回向顶回逐渐变宽，但基底膜的宽度从耳蜗底回向顶回却是逐渐变窄，这显然与许多教科书中对耳蜗基底膜宽度描述明显不同[6].大鼠耳蜗Corti器的宽度从耳蜗底回向顶回也是逐渐变宽，基底膜的宽度变化同样是由宽变窄，但是并不像小鼠那样明显，这一点显然既不同于教科书中对人类基底膜宽度变化的描述也不同于小鼠的基底膜宽度变化特征(图2C)，因此，我们认为Corti器的宽度、劲度和质量才是造成耳蜗不同部位具有不同频率响应的关键因素，而并不完全取决于基底膜的宽度。

　　1.2前庭

　　大鼠的前庭由前庭池(vestibularcavity)和半规管(semicircularcanals)组成。前者位于内耳中部，其外壁中部的卵圆窗(ovalwindow)被镫骨底板及环韧带封闭，上壁与上鼓室相隔，后壁与弓状下窝相隔，内壁与后颅窝相隔，下壁参与构成岩骨底面颅底(图1A)。在大鼠前庭池内侧骨壁的前下方有一个扁平的球囊(saccule)，后上方为哑铃状的椭圆囊(utricle)(图1D、2A)。球囊的下方靠外经联合管(ductusreuni?ens)与蜗管相通，靠内经内淋巴管(endolymphaticduct)与内淋巴囊(endolymphaticsac)相通[7].开口于椭圆囊后壁下角的前庭导水管(vestibularaqueduct)也向内与内淋巴管汇合汇入内淋巴囊。在球囊的内侧表面有一个处于矢状面呈钩形的球囊斑(maculasacculi)(图2D、3B)，球囊斑的感觉上皮面对前庭池的外侧壁，球囊斑的底部则紧贴前庭池的内侧骨壁(图1D)。在椭圆囊的上部有一个处于冠状面呈扇形的椭圆囊斑(maculautriculi)(图2D、3C)，椭圆囊斑感觉上皮面朝向后方(图1D、2A)，其底面的神经纤维和毛细血管经上筛斑(superiormaculacribrosa)骨壁小孔通向颅内。在球囊斑和椭圆囊斑的表面均覆盖着胶状的耳石膜(otolithicmembrane)，耳石膜的表层覆盖着结晶体样的耳石层(otoconiallayer)。毛细胞的动纤毛和静纤毛插入到耳石膜内，当头位发生直线加速运动时，耳石膜因惯性与囊斑产生相对位移造成毛细胞的纤毛弯曲，感觉上皮因此而产生相应的神经冲动，从而产生身体直线加速运动的感觉[1,2].

　　大鼠的半规管位于前庭池后方。这三个相互垂直的呈2/3环的中空骨管分别是外半规管(lateralsemicircularcanal)、上半规管(superiorsemicircularcanal)和后半规管(posteriorsemicircularcanal)，三个半规管借5个开口与前庭池相通。外半规管向外侧凸起，与水平面约成30°角，其壶腹端开口和单脚分别开口于前庭池外壁的上部和下部;上半规管垂直向上向后凸起，与水平面垂直，壶腹端开口于前庭池上壁的后部，上半规管的另一端与后半规管联合构成总脚开口于前庭后壁中部的内角;后半规管向后向外凸起，与水平面几乎平行，其壶腹端开口于前庭池下壁的内角，另一端与上半规管联合形成总脚。

　　大鼠的三个骨性半规管及其周围菲薄的骨壁共同围成一个开口朝向颅内的球形空洞(图1A)，内容小脑绒球叶。三个膜性半规管内充满内淋巴液，并借结缔组织小梁悬浮固定在充满外淋巴液的骨半规管内。在三个膜性半规管凸侧缘的壶腹内各有一个与半规管走向垂直的壶腹嵴。壶腹嵴的表面布满感觉毛细胞，毛细胞的动纤毛(kinocilium)和静纤毛(ste?reocilium)插入到壶腹嵴表面覆盖的胶质终帽(cupu?la)[1,2].当动物体位发生旋转运动时，与旋转平面平行的半规管内的壶腹嵴终帽就会与壶腹嵴产生最明显的相对位移，使毛细胞的纤毛随着终帽偏转并因此产生角加速运动的感觉。虽然大鼠的外半规管壶腹嵴与人类、猴、豚鼠等实验动物同样呈马鞍形[3],但是大鼠的上半规管和后半规管壶腹嵴却被从嵴中央13D-F)，这种结构到底具有什么特殊的生理学意义，目前尚不清楚。

　　大鼠前庭各个感受器的结构基本相同，分布在各个感受器表面的Ⅰ型或Ⅱ型感觉毛细胞的底层均为一层支持细胞(图1D)。这些支持细胞形成了一道明显的分界线，所有的前庭神经纤维在穿越支持细胞之前都脱去髓鞘才能进入到前庭感觉上皮区实现与毛细胞之间的突触联系。来自前庭神经元的具有大神经纤维特征的传入神经末梢以高脚酒杯的形态特征将形似“细颈花瓶”的Ⅰ型毛细胞自底部一直包裹到颈部;具有小神经纤维特征的前庭神经末梢则仅在细胞底部与柱状的Ⅱ型毛细胞形成突触联系[1,2].支配或接受前庭上半规管壶腹嵴、外半规管壶腹嵴、椭圆囊斑以及球囊斑钩部的神经纤维均经上筛斑汇聚到前庭上神经束(图1D)入颅，而支配或接受球囊斑主体部分和后半规管壶腹嵴的神经纤维末梢则分别经中筛斑和下筛斑汇聚到前庭下神经束(图2B)。

　　另外，球囊和椭圆囊还有一个最大的不同在于椭圆囊斑感觉上皮周围具有丰富的暗细胞群，而球囊内部却没有暗细胞(图1D)。球囊因此而不能产生内淋巴液，只能依靠从连合管接受由血管纹分泌的来自蜗管的内淋巴液，其内淋巴液的吸收则也只能通过内淋巴管汇集到内淋巴囊，这可能就是形成内淋巴液纵向流动循环的主要原因。与内淋巴液纵向流动循环截然不同的是，椭圆囊囊壁上的上皮细胞中含有大量的暗细胞，因此椭圆囊及三个半规管内的内淋巴液分泌和吸收大都以辐射流循环的方式来完成，也就是说，在椭圆囊和三个半规管壶腹内的内淋巴液主要由周围的暗细胞分泌也由这些暗细胞吸收，这可能就是为什么破坏内淋巴囊仅仅造成球囊和蜗管内积水但是却不能造成椭圆囊和半规管积水的重要原因[7].

　　2大鼠内耳的解剖步骤

　　观察大鼠内耳的病理变化通常可以采取颞骨切片和膜迷路取材及铺片两种方式。颞骨切片方法能够显示动物内耳的立体结构，充分展示内耳深部结构各个终器之间的相对位置关系;既可以证明耳蜗和前庭毛细胞的病理学改变，也可以观察位于螺旋管内的螺旋神经节细胞和位于上筛斑和中筛斑骨壁内侧的前庭上神经元和前庭下神经元病变，而且还可以评估血管纹、半规管、内淋巴管及内淋巴囊内的病理学改变。膜迷路取材及铺片方法除了能够对各感觉终器提供全面完整地定量分析之外，还能为进一步应用分子生物学研究手段提供纯粹的内耳实验样品，因此，膜迷路取材技术更有助于开展在基因水平和蛋白质水平上的研究[8-12].自1966年Engstrom重新提倡使用耳蜗铺片技术以来[13],许多研究者对耳蜗铺片技术进行了不断改进。我们于1979年在戴树宏老师最早在中国举办的耳蜗铺片学习班学会了Engstrom的经典耳蜗软铺片技术，我们在此基础上首先提出了改良耳蜗硬铺片技术[14],随后又拓展了耳蜗螺旋韧带铺片[15]和前庭各终器铺片[16]乃至全内耳膜迷路铺片等一系列耳蜗膜迷路取材技术[17].由于不同动物的内耳解剖结构存在着一定差异，因此大鼠内耳的取材步骤与豚鼠内耳膜迷路取材并不相同[3].

　　我们通过总结先前积累的实践经验，介绍两种不同的大鼠内耳膜迷路取材及铺片技术如下。

　　大鼠内耳取材技术可以分为不经脱钙的膜迷路取材方法和经脱钙的膜迷路取材方法。前者主要适用于内耳膜迷路基因转染实验中对转染基因标记及转化蛋白质的观察、各种荧光免疫组织化学观察、以及为各种分子生物学研究提供不同的内耳组织材料。后者虽然在显微操作上相对容易，但由于脱钙过程造成的酶蛋白失活和抗原抗体反应减弱或丢失以及染色标记褪色等问题，脱钙后取材的方法大多仅适用于常规病理学检查。根据不同的实验需求和染色标记步骤，样品染色或标记有时可能需要安排在组织固定之前有时需要安排在组织固定之后，这主要取决于标记信号是否需要进行活细胞标记以及标记物能否在脱钙过程中保存。例如琥珀酸脱氢酶不能耐受醛类化学固定剂，因而应用四唑盐法标记琥珀酸脱氢酶就必须对耳蜗施行先灌流染色然后再固定，由于四唑盐法产生的酶组织化学蓝色甲臜(formazan)沉淀物可以耐受脱钙处理，因此适合应用脱钙后取材的方法并按照软铺片的方法来制备样品;然而经转染后产生的绿色荧光蛋白以及各种探针荧光标记的蛋白质大多不能耐受脱钙，它们或者会在脱钙过程中丧失抗原抗体反应性，或者会在脱钙过程中发生荧光信号的淬灭，因而对施行荧光免疫组织化学染色的样品，我们主张采用不脱钙的方法来制备样品。

　　2.1硬铺片法

　　将固定后的颞骨置于盛有蒸馏水的玻璃皿中。