复合bFGF缓释微球的制备与性能测定
作者:佚名; 更新时间:2014-12-13

           作者:刘锐,黄沙,金岩,吴红,姜玲,刘涛

 【关键词】  ,碱性成纤维细胞生长因子

    Preparation and characteristic test of bFGFimpregnated microsphere

  【Abstract】 AIM: To prepare the basic fibroblast growth factor (bFGF)impregnated microsphere and to study its characteristics. METHODS:  The bFGFimpregnated microsphere was prepared by improved emulsified coldcondensation method. The physical properties, drug content and encapsulation were detected. The drug release in vitro was measured by ELISA. RESULTS:  The average diameter of microsphere was (12.4±3.6) μm, the average drug content was 0.24% and encapsulation was 96.82%. In vitro, 28.23% of bFGF was sustainedreleased on the first day, 57.19% from the second to the fifth day and 93.94% by the seventh day. CONCLUSION:  The preparation method is simple, rapid and accurate and the release of bFGF from the microspheres can be sustained for a longer time.

  【Keywords】 basic fibroblast growth factor; microsphere; sustainedrelease; encapsulation

  【摘要】 目的:制备复合碱性成纤维细胞生长因子(bFGF)的可降解缓释微球,考察其各项性能,为进一步应用于组织工程奠定基础. 方法:采用改良的乳化冷凝法交联制备复合bFGF的缓释微球,测定微球形态、粒径、载药率和包裹率等,并采用ELISA法考察其体外bFGF的缓释效能. 结果:缓释微球平均粒径(12.4±3.6) μm;平均载药率为0.24%,平均包裹率为96.82%.  d 1体外释放28.23%,2~5 d时累积释放率达到57.19%, d 7时释放减慢且累计浓度为93.94%. 结论:复合bFGF的缓释微球制备工艺简便,性能优良;可在较长时间内持续释放活性bFGF,与组织工程支架的结合应用具有可行性.

  【关键词】 碱性成纤维细胞生长因子;微球;缓释;包裹率

  0引言

  生长因子的应用一直是组织工程领域的重要课题之一. 它具有多种生物学活性,可提供有利于细胞生长的微环境,促进新生组织血管生成等[1]. 但由于生长因子半衰期短,溶液进入体内后迅速扩散、变性或酶解,难以保持其生物活性[2]. 我们制备复合碱性成纤维细胞生长因子(basic fibroblast growth factor,bFGF)的缓释微球载体,并考察微球形态、粒径、载药率、包裹率及释放效果等性能,以期利用此种新型载体在较长时期内持续释放bFGF,为今后与组织工程支架的结合应用奠定基础.

  1材料和方法

  1.1材料

  明胶(等电点50,相对分子量99 000,华美生物工程公司),人重组bFGF溶液(25 mg/L,等电点9.6,Sigma公司),人bFGF定量EIA试剂盒(QuantiKineR, R&Dsystems),250   g/L戊二醛,丙酮,异丙醇,无水乙醚,液体石蜡,氨基乙酸为国产分析纯,Span80(Sigma公司)为进E1分析纯,水为双蒸水,JJ1型精确电子搅拌器仪,TGL16G高速离心机,GENESIS冻干机(Virtis公司),BX41数码显微镜(Olympus).

  1.2方法

  1.2.1复合生长因子微球的制备将含有10 g/L Span80的液体石蜡30 mL置于三口瓶中预热至55℃,快速搅拌下滴加入同样温度的明胶水溶液4 mL,并调节搅拌速度至450 r/min,继续搅拌10 min;形成油包水乳剂后迅速改冰浴,继续搅拌10 min,使其完成固化;加入250 g/L戊二醛0.1 mL,搅拌下预固化2 h,4℃固化24 h,用适量丙酮、异丙醇、乙醚洗涤,挥去乙醚,信捷职称论文写作发表网,真空干燥,得淡黄色粉末状微球,将200 μL的bFGF溶液滴加在20 mg的冻干明胶微球上,在室温下保持30 min以使bFGF完全融入微球. 钴60照射灭菌封存. 以丙酮为分散剂将空白微球样本及含有bFGF的微球样本置于光镜下,观察其外形及分散度. 同时测量500个微球的直径计算其平均粒径. 以算术平均径为微球的平均粒径,计算公式为:平均粒径=n1d1+n2d2+…+nndn/n1+n2+n3+…+nn    式中n1,n2…nn为粒子数,d1,d2…dn为粒径.

  1.2.2微球含量及缓释性能测定根据人bFGF定量EIA试剂盒说明书配置标准液,在492 nm处测各孔A值. 以标准品0,8,16,31,62,125,250和500 ng/L之A值作出标准曲线并拟合线形回归方程. 取微球样品20 mg,放入PBS缓冲液中,加热至完全溶解,冷却后再用缓冲液稀释定容. 测出A492 nm值,然后在标准曲线上查处相应bFGF含量,并由此计算出微球的载药率以及标准率. 载药率=(bFGF质量/缓释微球质量)×100%. 包裹率=(bFGF质量/缓释微球中bFGF理论质量)×100%. 取缓释微球(2 mg),用PBS缓冲液100 mL作为溶出介质. 药物体外溶出仪的温度保持在(37.0±0.5)℃.磁力搅拌转速100 r/min. 分别于各时间点(1,2,3,4,5,6,7 d)取样100 μL. 每次取样后,立即补充同温度的PBS缓冲液100 μL. 按1~7 d顺序,将稀释10倍的样品,分别加入微孔板7个孔中,每孔加样50 μL并同时加入样品稀释液各50 μL. 将反应板充分混匀后置37℃ 120 min. 用洗涤液将反应板充分洗涤4~6次,向滤纸上印干. 每孔加入第一抗体工作液50 μL,将反应板置37℃ 60 min. 洗板,并在每孔中加入酶标抗体工作液100 μL.将反应板放置于37℃ 60 min. 洗板后加入底物工作液100 μL,置37℃暗处反应10 min. 每孔中加入一滴终止液,混匀. 在A492 nm处测各孔值. 根据A值在标准曲线上查出相应bFGF含量.



  2结果

  2.1缓释微球的形态和粒径空白缓释微球呈圆球状,形态及粒径大小较均匀(Fig 1A);复合有bFGF的缓释微球经溶涨体积变大,形态饱满(Fig 1B). 微球粒径7~20 (12.4±3.6) μm,占85.6%.

  2.2bFGF标准曲线在492 nm处测各孔A值,由此绘制标准曲线(Fig 2)并拟合线性回归方程为: A=0.0042C+0.0154,r=0.9996 (P<0.001),bFGF在0~500 ng/L范围内符合线性关系.

  2.3缓释微球中bFGF的含量在492 nm处测定得A值,根据回归方程计算出相应bFGF含量. 缓释微球中bFGF质量为4.841 μg,由此得出微球平均载药率为0.24%,平均包裹率为96.82%(n=5).

  2.4缓释微球体外溶出度测定由缓释微球体外释放样品各个时间点的A值得出的bFGF浓度,并由此绘制出微球体外累积释放量曲线(Fig 3).A: Blank; B: bFGFimpregnated.

  3讨论

  bFGF是一类具有较高活性的多聚肽,对多种中胚层和神经外胚层来源的细胞具有广泛的生物学活性,可改变一些细胞的趋化性,诱导或抑制特殊蛋白质的合成或分泌[3]. 但由于这种多功能细胞因子半衰期短,易失去活性,应用效果不甚理想. 我们设计的缓释微球可缓释药物、靶向输送、保证药物的治疗作用的前提下减少给药剂量以及降低药物毒性等[4]. 通过含量测定,缓释微球对bFGF的包裹率可达96.82%. 体外证实,复合bFGF缓释微球在7 d内对上皮细胞仍有促进增殖活性[5]. bFGF的累积释放量呈缓慢上升趋势, d 1累积释放率为28.23%,不存在初始阶段的“突释”现象[6];2~5 d,累积释放量率57.19%,克服了部分同类产品释放药物时初期浓度过大,短期内又迅速降低现象;到7 d时,累积释放率达到93.94%,虽然释放速率减慢,但体外仍有bFGF生物活性.

  本实验对缓释载体的研制尚处于实验室阶段,但由于此种缓释微球性能优良,可以根据组织工程化产品应用的不同需要,生产出包裹其他药物的缓释微球,也可同时包裹几种生长因子发挥联合调控的作用. 本设计工艺简便,能较长时间持续释放活性生长因子,在组织工程研究领域具有广阔的应用前景.

  【参考文献

  [1] Richardson TP,Peters MC.Polymeric system for dual growth factor delivery[J].Nat Biotechnol, 2001;19(9):1029-1034.

  [2] Kawai K,Suzuki S,Tabata Y,et al. Accelerated tissue regeneration through incorporation of basic fibroblast growth factorimpregnated gelatin microspheres into artificial dermis [J]. Biomaterial,2000;21:489-499.

  [3] Kinsella L,Chen HL,Smith JA,et al.Interactions of putative heparinbinding domains of basic fibroblast growth factor and its receptor,FGFR1,with heparin using synthetic peptides[J].Glycoconj J,1998;15:419-422.

  [4] Maysinger D, Krieglstein K, Filipovic J,et al. Microencapsulated ciliary neurotrophic factor:Physical properties and biological activities[J]. Exp Neurol, 1996;138:177-l88.

  [5] 黄沙,金岩, 吴红. 制备复合生长因子的缓释微球并考察其对细胞的影响[J]. 上海生物医学工程,2004;25(4):22-25.

  Huang S, Jin Y,  Wu H. Preparation and cell effect test of bFGFimpregnanted microspheres[J]. Shanghai Biomed Eng,2004;25(4):22-25.

  [6] Edelman ER,Mathiowitz E, langer R, et al. Controlled and modulated release of basic fibroblast growth factor[J].Biomaterial,1991;12:619-626.

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