1．3．4 RT-PCR检测 应用Trizol提取上述收集的EPCs总RNA，测定RNA浓度后反转录为cDNA再进行PCR反应。CXCR4引物序列：上游引物5’－AATCTYC CTGCCCACCATCT－3’，下游引物5’－GACGCCAACATAGACCACCT－3’，产物为367 bp。内参照为 GAPDH，上游引物：5’－TATGATGACATCAAGAAGGTGG－3’，下游引物：5’－CACCACCCTGTFGCTGTA，扩增片段213 bp。反应产物用2％琼脂糖凝胶电泳。图像分析软件(Band Leader Application 3.0)分析电泳条带灰度值，目的基因mRNA表达的相对强度＝目的基因条带灰度值/内参照条带灰度值。
　　1．3．5统计分析采用SAS 8.1 for windows统计软件进行数据处理。计量资料以均数±标准差(χ±s)表示，两组间均数比较用成组t检验，计数资料采用Fisher法进行检验，以P<0.05为差异具有统计学意义。
　　
　　2 结果
　　
　　2．1 EPCs的鉴定及计数
　　
　　培养4 d后可见贴壁的单个核细胞，7 d后单个核细胞变为梭形，内皮样细胞。对贴壁细胞行荧光化学染色后激光共聚焦显微镜下观察，见>80％的细胞双染色阳性，说明这些细胞能内吞ac—LDL和结合UEA-1，可被认为是正在分化的EPCs。随机选择15个视野计数双阳性细胞，见AMI组患者外周血来源EPCs为(439±54)个/mm，明显高于对照组(263±37)个/mm，P<0.01。
　　
　　2．2 EPCs对SDF-1迁移能力的比较
　　
　　与对照组相比，AMI组外周血来源EPCs对SDF-1的迁移能力明显增强。[175±19) vs (98±11)个/mm，P<0.01]。
　　
　　2．3流式细胞仪测定EPCs表面CXCR4的表达
　　
　　AMI组为(69.5±12.1)％，对照组为(58.7±10.4)％，AMI组较对照组明显增高(P